miR-21对宫颈癌细胞体外生长、迁移及 调控ERK/MAPK通路的机制研究

miR-21对宫颈癌细胞体外生长、迁移及

调控ERK/MAPK通路的机制研究

夏红,褚桂芬,杨翔,杨丽,胡金霞

1.广州市番禺中心医院妇科,广东广州 511400;2. 滨州医学院生物化学与分子生物学教研室,山东烟台 264003 )

文章已被现代妇产科进展杂志社录用,现代妇产科进展杂志投稿网址链接:http://www.zazhi114.cn/xiandaifuchankejinzhan

【摘要】 目的 探讨微小RNA-21(miR-21)对宫颈癌Siha细胞体外生长、侵袭迁移及调控ERK/MAPK通路的机制研究。方法 采用LipofectamineTM2000 脂质体法将miR-21模拟物(minic-21)、模拟物对照寡核苷酸(minic-nc)、抑制剂(inhibitor-21)和抑制物对照寡核苷酸(inhibitor-nc)转染到人宫颈癌Si ha细胞。转染48h 后,采用集落形成实验观察细胞生长,Trans well法检测细胞迁移及侵袭能力,流式细胞仪检测细胞凋亡,Western blot检测各组细胞中ERK /MAPK信号通路蛋白的表达。结果 与相应对照组比较,minic-21Si ha细胞的克隆集落数明显增多(P0.01,inhibitor-21克隆集落数明显减少(P0.01。minic--21组细胞体外迁移及侵袭能力均明显提高P0.01inhibitor-21组的细胞迁移及侵袭能力明显降低(P0.01)。minic-21组细胞增殖率升高而凋亡率降低(P0.05),inhibitor-21组细胞增殖率降低而凋亡率升高(P0.05)。Western blot检测显示,minic-21能明显上调RSKMSKRAFMEKMAPK的表达(P0.05),inhibitor-21能明显下调RSKMSKRAFMEKMAPK的表达(P0.05)。结论  改变miR-21的表达可影响Si ha细胞体外生长和侵袭迁移能力,可能与调控ERK/MAPK信号通路的激活有关。

【关键词】 微小RNA-21;宫颈癌;迁移;侵袭;ERK /MAP通路;

Effect of micro RNA-21on growthmigration and ERK/MAPK signaling pathway of cervical cancer cell line Si ha*. Xia Hong1, Chu Guifen1**, Yang Xiang1, Yang Li1, Hu Jinxia2. 1. Department of Gynecology, PanYu central hospital, GuangZhou 511400; 2. Department of Biochemistry and Molecular Biology, Binzhou Medical University, Shandong Yantai 24002

AbstractObjective To explore the role of micro RNA-21 (miR-21) on the growthmigration and invasion of cervical cancer cell line Si ha and its targeting regulation of ERK /MAP signaling pathwayMethods  Lipofectamine TM 2000 liposome was used to transfect miR-21 minic (minic-21 group)minic oligonucleotides (minic-nc group)inhibitor (inhibitor-21 group) and inhibitor oligonucleotides (inhibitor-nc group) into human cervical cancer Si ha cellsAt 48 h after transfection, the cell proliferation, cell cycle and migration ability of the cells were detected by colony-forming experiment and Trans well test, respectivelyThe cell apoptosis was examined with Annexin---FITC / PI double staining via flow cytometry. Western blot was used to detect the changes of RSKMSKRAFMEK and MAPK proteins in ERK /MAP signaling pathwayResults   Compared with the corresponding contrast group, cell colony formation significantly increased in mimic-21 group. The cell colony formation significantly reduced in inhibitor-21 group. The difference was statistically significant (P0. 01). The number of migration cells and invasion cells in minic-21 group were obviously more than those in minic-nc group(P0.01).The number of migration cells and invasion cells in inhibitor-21 group were obviously less than those in inhibitor-nc group(P0.01). Compared with the control groupthe apoptotic rate decreased in minic-21 group. However, the apoptotic rate increases were observed in the inhibitor-21 group, * the difference was statistically significant (P<0.05). Compared with the minic-nc group, minic-21广东省医学科研基金项目(No: A2016294);国家自然科学基金(No: 81502536

** 通讯作者 Email:18926210318@qq.com

can up-regulate the expression of RSKMSKRAFMEK and MAPK(P0. 05). Inhibitor-21 can down-regulate the expression of RSKMSKRAFMEK and MAPK(P0. 05).  Conclusions  Altered expression of miR-21 can affect the growth and migration of Si ha cells. It may be related to the targeting regulation of ERK /MAP signaling pathway.

Key wordsMicro RNA ( miR-21) ; Cervical cancer; Migration; Invasion; ERK /MAP signaling pathway

前言

宫颈癌是世界女性中最常发生的恶性肿瘤之一,是发展中国家女性第二大诊断癌症和癌症死亡的第三大原因[1]。肿瘤转移是导致宫颈癌患者术后复发以及死亡的主要原因。miR-21是一种常见的肿瘤相关性mi RNA,几乎参与了所有恶性肿瘤的发生及转移等[2-3]。丝裂原活化蛋白激酶(mitogen active protein kinaseMAPK)是生物体内最重要的信号转导系统之一[4]。细胞外信号调节激酶( extracellular signalregulated kinaseERK) 信号转导通路被认为是经典的MAPK通路,参与广泛的生理和病理过程[5]。在宫颈癌中,有关miR-21ERK /MAPK通路的分子调控机制罕见报道。因此,对miR-21及MAPK信号通路深入研究,有助于进一步了解宫颈癌的发病机制,对宫颈癌生物基因治疗新靶标具有积极意义。

1 材料与方法

1.1 细胞及主要试剂  人宫颈癌Si ha细胞购自南京科佰生物科技有限公司,DMEM 培养基购自美国Hyclone公司,Lipo-fectamine 2000购自美国(invitrogen)英杰生命技术有限公司,RNA提取试剂盒购自广州易锦生物科技有限公司,Trizol 试剂购自日本宝生生物工程有限公司(大连)PCR所需引物购自上海吉玛制药技术有限公司Trans well试剂盒购自美国康宁公司,MAPK 信号通路相关蛋白购自美国CST公司BCA 蛋白定量试剂盒HRP-羊抗兔IgG购自碧云天生物科技有限责任公司

1.2 实验方法

1.2.1 细胞培养、分组及转染  将宫颈癌Siha细胞接种于含10%胎牛血清的DMEM 培养液中,37℃、5% CO2的恒温培养箱中培养,当细胞密度达80%左右进行转染,细胞在转染前一天按2.0105接种于6孔板中。采用Lipofectamine2000脂质体法将miR-21模拟物(minics)、模拟物对照寡核苷酸、抑制剂(inhibitor)和抑制剂对照寡核苷酸转染至人宫颈癌Siha细胞并分为minic-21组、minic-nc组、inhibitor-21组和inhibitor-nc组。转染过程严格按照试剂盒说明书进行操作。每组设3个复孔,转染后将细胞置于恒温培养箱中继续培养 48 h 进行后续实验。

1.2.2 实时定量PCR( Quantitative real-time reverse transcription PCRQPCR)检测mi R-21水平  按照Trilzol试剂使用说明书提取细胞总RNA,超微量分光光度计对RNA浓度和纯度进行检测。按反转录试剂盒说明书采用特异性反转录引物反转录为cDNA,以 cDNA 为模板,U6为内参。MiR-21引物货号:上游HmiRQP0316下游:QP010-03。扩增条件:95℃预变性10min95℃变性10 s60退火20 s72延伸10 s扩增40个循环。反应结束后采用2-△△Ct法计算mi R-21的相对表达。

1.2.3 集落形成实验  转染48h后,胰酶消化,重悬细胞并计数,400/孔的密度接种6培养板上,培养箱内连续培养7-14(3天更新培养基1),采用结晶紫染色法固定染。 

1.2.4 Trans well 分析细胞迁移  细胞转染48h,将细胞饥饿12h后制备细胞混悬液,并在无血清培养基中调整细胞密度为1×105/ml然后将细胞悬液加入到Trans well 的上室中,下室中加入含10% 胎牛血清的培养基。37℃培养,细胞侵袭24h,取出小室,将Trans well小室基底膜完整切除,用无菌棉签擦去上室内细胞,多聚甲醛固定15min,苏木精染色10 min,显微镜下随机取10视野计数细胞迁移数,取平均值。

1.2.5 Trans well 分析细胞侵袭  用包被Matrigel胶的Trans well小室,在小室中加入500μL浓度为1×105/ml的细胞悬液,调整细胞浓度为5×10/ml,余步骤同细胞迁移实验。显微镜下随机取6个视野计数细胞侵袭数目,取平均值。

1.2.6 流式细胞术检测细胞凋亡  采用流式细胞术联合 Annexin -FITC /PI 双染法检测凋亡率。细胞分组同上,用不含 EDTA 的胰蛋白酶消化各组细胞并得到单细胞悬液,PBS洗涤2次后,收集( 15)×105个细胞,加入 500 μL Binding buffer重悬细胞,之后分别加入 5μL Annexin-FITC 5 μL PI 混匀,室温避光反应 15 min,流式细胞术检测细胞凋亡,具体操作步骤按说明书进行。

1.2.7 Western blot检测ERK/MAPK通路蛋白的表达  转染48h后,收集细胞,用PBS3次,然后加入已添加蛋白酶抑制剂的细胞裂解液进行裂解后提取总蛋白。等量的蛋白进行 SDS-PAGE 凝胶电泳分离,然后转至 PVDF 膜。用 5% BSA 进行封闭后,依次孵育一抗和二抗,最后进行显影拍照

1.3 统计学方法  实验所得统计数据用均数±标准差(`x±s)表示,SPSS 13.0软件以ANOVAone-way analysis of variance)法分析组间统计学差异,P<0.05则认为有统计学显著性差异、P<0.01则认为有统计学非常显著性差异;并用Graph Pad Prism 5软件作图。

2 结果 

2.1  改变miR-21表达对宫颈癌Siha细胞集落形成的影响  转染48h后,mimic-21Si ha细胞的克隆集落数(585.30±16.95)minic-nc组(399.30±15.60明显增多(P<0.01)inhibitor-21Si ha细胞的集落数(269.30±9.53)较inhibitor-nc组(393.00±13.61明显减少(P<0.01)见图1

       

1 改变mi-21表达对Si ha细胞集落形成能力的影响 

**:与相应对照组相比,P0.01

2.2 改变miR-21表达对人宫颈癌Si ha细胞迁移及侵袭能力的影响Trans well实验检测各组Si ha细胞的体外迁移及侵袭能力,结果证实minic--21Si ha细胞体外迁移及侵袭能力较minic—nc组均明显提高(p0.01),inhibitor-21Si ha细胞迁移及侵袭能力较inhibitor-nc组明显降低(P0.01)。见表1,图2,图3,图4

1  MiR-21Si ha细胞迁移及侵袭能力的影响(`x±s

组别

细胞迁移数()

细胞侵袭数()

minic-nc

113.400±7.287

101.500±8.872

minic-21

222.700±3.011***

194.000±6.885***

Inhibitor-nc

71.100±4.831

101.000±7.389

Inhibitor-21

13.000±1.555***

41.830±5.029***

    

2 改变miR-21表达对Si Ha细胞体外迁移及侵袭能力的影响(A 迁移, B 侵袭)

***:与相应对照组相比,P0.01

 

3 各组Trans well小室转染miR-21后细胞迁移图(光学显微镜,×10)

 

4 各组Trans well小室转染miR-21后细胞侵袭图(光学显微镜,×100)

2.3 改变miR-21表达对宫颈癌Si ha细胞凋亡的影响  采用 Annexin -FITC /PI双染法检测Si ha细胞的凋亡率。转染48 h后,minic-21组细胞凋亡率(16.55±0.05) %明显低于minic-nc(31.00±1.800) %inhibitor-21组转细胞凋亡率为(68.60±1. 90) %高于inhibito-nc组的( 47.10±2.60) %,差异均有统计学意义(P<0. 05)。见图5

    

5  改变miR-21表达对Si ha细胞凋亡率的影响

*:与相应对照组相比,P0.05

2.4 改变miR-21 表达对Si ha 细胞ERK/MAPK表达的影响   采用Western blot检测ERK/MAPK通路中相关蛋白的表达,minic-21组较minic-nc组能明显上调RSKMSKRAFMEKMAPK的表达,inhibitor-21组较inhibitor-nc组能明显下调RSKMSKRAFMEKMAPK的表达,差异均有统计学意义(P0. 05)。见表3,图6

2 改变miR-21表达对各组细胞ERK/MAPK信号通路蛋白的影响(`x±s

通路蛋白

组  别

minic-nc

minic-21

Inhibitor-nc

Inhibitor-21

RSK

0.678±0.016

0.904±0.009*

1.155±0.056

0.680±0.016*

MSK

0.779±0.010

1.209±0.081*

1.223±0.038

0.724±0.063*

Raf

0.880±0.007

1.236±0.013*

1.202±0.056

0.726±0.040*

MEK

0.757±0.026

1.154±0.048*

1.258±0.059

0.620±0.069*

MAPK

0.553±0.242

0.937±0.594*

0.861±0.479

0.509±0.253*

*:与相应对照组相比,P0.05

   

6  改变miR-21表达对各组细胞ERK/MAPK信号通路蛋白的影响

3 讨论

宫颈癌的发生转移机制非常复杂,涉及多种癌基因、抑癌基因和信号转导通路的改变,然而具体的分子调控机制仍有待进一步探讨。Mi RNA1933年被发现以来,一直是肿瘤领域研究的热点[6-7]。研究发现[8-9],mi RNA分子表达谱的变化与肿瘤的发生发展密切相关,改变肿瘤组织细胞中特定mi RNA分子的表达水平可能是肿瘤基因治疗新靶标开发的重要补充。

mi R-21是一种具有癌基因特性的促癌mi RNA,是肿瘤发生、发展中的重要调控因素[10-11],而是否参与宫颈癌的生长及转移尚无确切的证据。Jiang[12]报道,过表达的mi R-21能增强肝癌干细胞的表型,促进肝细胞癌的侵袭。Yang等[13]报道,过表达mi R-21可靶向和抑制肿瘤抑制基因PTEN表达,从而促进前列腺癌细胞PC-3的增殖和侵袭。miR-21在肾癌Caki-1细胞中高表达,其通过下调TCF-21的表达水平,从而抑制KISS 1基因表达,增加肾癌细胞侵袭力[14]

本研究中,我们首先将miR-21mimicsinhibitor转染至Si ha细胞,通过调节miR-21的表达水平,利用集落形成实验观察细胞的生长,Trans well法检测细胞迁移及侵袭能力,流式细胞仪检测细胞凋亡,western blot检测ERK/MAPK信号通路蛋白表达的变化。结果显示转染miR-21 mimics后,Si ha细胞的生长能力明显增强(P0.01,细胞迁移及侵袭能力增强(P0.01),凋亡能力下降(P0.05,与minic-nc组比较差异均有统计学意义。转染miR-21 inhibitor后细胞生长受到抑制(P0.01, 迁移及侵袭能力减弱(P0.01,凋亡能力增强(P0.05,与inhibitor-nc组比较差异均有统计学意义。说明miR-21可能通过促进宫颈癌细胞生长,增强迁移及侵袭能力,在宫颈癌发生发展中发挥癌基因的作用。这与既往研究结论一致。

众所周知,MAPK 信号通路具有重要的生物学功能,在许多肿瘤细胞的生长、增殖、侵袭和转移等过程中起重要调节作用[15]ERK 信号通路被认为是经典的 MAPK通路。其活化过程是通过RasRafMEK通路作用于ERK,活化的ERK作用于某些关键的调控因子,从而起到调节细胞周期,调控细胞的增殖、分化、凋亡和转移等作用[16-18]。据报道许多mi RNA是通过MAPK信号通路来发挥其功能[19]。研究证实,miR-378在心肌细胞中过度表达,可通过抑制RAS-MAPK信号通路来抑制心肌细胞增殖[20]。过表达miR-126可通过调节ERK/MAPK信号通路促进间质干细胞向内皮细胞分化[21]。动脉粥样硬化中miR-136可通过ERK 1 /2MAPK 通路调节血管平滑肌细胞增殖[22]Li [23]发现 mi-181b 可通过调节 p-ERK 1/2平衡来调控血管平滑肌细胞增殖。牛晓兵[24]研究表明,miR-143可通过调节KRASp-ERK1/2和细胞周期蛋白D1的表达抑制RAS-MAPK信号通路激活,从而抑制前列腺癌细胞的增殖和迁徙。

本文结果显示,转染miR-21 minic后,ERK通路中P-RSKP-MSKP-RAFP-MEKP-MAPK的相对蛋白表达量明显升高,相反转染miR-21 inhibitor后,ERK通路中的上述蛋白的相对蛋白表达量明显降低,与阴性对照组相比,差异均有统计学意义(P0. 05)。据此推测,mi R-21可能通过对ERK/MAPK 信号通路的调节来影响人宫颈癌Si ha细胞的生长和迁移。 

本研究有两点不足:一、未使用ERK/MAPK 通路抑制剂验证逆转mi R-21过表达对人宫颈癌细胞生长和迁移的促进效应;二、未通过动物模型对miR-21在宫颈癌发生发展中的作用进行体内研究。后续我们将通过相关实验验证并进一步阐明。综上所述,改变miR-21的表达可影响Si ha细胞体外生长和迁移能力,可能与调控ERK/MAPK信号通路的激活有关。

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